Strona główna

 

Algorytm badań immunologicznych

 


Zasady zgłaszania do przeszczepienia nerki 
Algorytm badań immunologicznych 
Program wymiany par 

 

Poltransplant 
Aktualności 
Informacje 
Zasady Alokacji 
Krajowa Lista Oczekujących 
Rejestr Dawców Szpiku 
Centralny Rejestr Sprzeciwów 
Prawo 
Formularze/Forms 
Publikacje 
Krajowa Rada Transplantacyjna 
Konsultanci - Transplantologia 
Ośrodki Transplantacyjne 
Koordynatorzy Transplantacyjni 
Statystyka 2024 
Oświadczenie Woli 
Szkolenia ETPOD 
Unia Europejska / WHO 
Pozwolenia Ministra Zdrowia 
Pytania i Odpowiedzi 
Kontakt 

 

 

Algorytm obowiązujący po udostępnieniu zaktualizowanej wersji Ustawowych Rejestrów Transplantacyjnych.

 

Algorytm obowiązujący po udostępnieniu zaktualizowanej wersji Ustawowych Rejestrów Transplantacyjnych.

1)  Wykonanie specjalistycznych badań kwalifikacyjnych zgodnie z art. 16c. ustawy z dnia 1 lipca 2005 r. o pobieraniu, przechowywaniu i przeszczepianiu komórek, tkanek i narządów (niezbędne do aktywacji potencjalnego biorcy):

    •   Typowania tkankowego - badania antygenów zgodności tkankowej w zakresie minimum HLA- A, B, DRB1. Badania należy wykonać w ciągu 14 dni od daty pobrania materiału.
    •   Poziomu przeciwciał - badanie PRA-CDC (minimum 1 raz). Badania w surowicy należy wykonać maksymalnie 45 dni od pobrania materiału.

▶  Powyższe dotyczy nowych zgłoszeń.
▶ W przyszłości przewiduje się aktywację po wykonaniu kompletu badań z dwóch pobrań w różnym czasie: typowania tkankowego HLA- A, B, C, DRB1 (DRB3*/DRB4*/DRB5*), DQA1/B1, DPA1/B1 oraz poziomu przeciwciał PRA-CDC + anty-HLA Luminex screen.
 Ostateczny zakres badań oraz terminy raportowania wyników są określone w umowie na wykonanie specjalistycznych badań kwalifikacyjnych HLA i PRA.

2)  Badanie kwalifikacyjne typowania tkankowego – badania antygenów zgodności tkankowej (HLA)
Potencjalny biorca i dawca przed przeszczepieniem – wykonanie badań w zakresie antygenów HLA- A, B, C, DRB1 (DRB3*/DRB4*/DRB5*), DQA1/B1, DPA1/B1.
Potencjalni biorcy – minimalnie na niskim poziomie rozdzielczości ze wskazaniem odpowiednika serologicznego, optymalnie na wysokim poziomie rozdzielczości.
Zmarli dawcy – typowanie metodą Real-Time PCR umożliwiające wskazanie najczęstszych alleli.

▶ Powyższe do zastosowania po wdrożeniu typowania zmarłego dawcy metodą Real-Time PCR w ośrodkach przeszczepiających oraz po zawarciu umowy pomiędzy PZT i Poltransplantem na finansowanie typowania potencjalnego biorcy w rozszerzonym zakresie.
▶ U potencjalnych biorców zakwalifikowanych do kolejnego przeszczepienia zaleca się wykonać weryfikacyjne oznaczenie antygenów zgodności tkankowej (HLA).

3)  Badanie kwalifikacyjne poziomu przeciwciał (w tym monitorowanie przed przeszczepieniem) – badania PRA i anty-HLA
PRA-CDC (Panel Reactive Antibodies-Complement Dependent Citotoxicity) - badania stopnia uczulenia potencjalnego biorcy ze zróżnicowanym panelem limfocytów od minimum 30 niespokrewnionych osób metodą mikrolimfocytoksyczności zależnej od dopełniacza: 4 razy w roku (co kwartał). U potencjalnych biorców zimmunizowanych (PRA-CDC ≥ 50% w poprzednim badaniu) należy równolegle wykonać test PRA-CDC z DTT celem weryfikacji obecności przeciwciał IgM.

 Przewiduje się uzgodnienie wspólnego protokołu badania z DTT i cysteiną dla wszystkich pracowni zgodności tkankowej

Anty-HLA (Luminex screen), wykrywanie – oznaczanie obecności przeciwciał anty-HLA- 4 razy w roku (co kwartał). Poza oceną jakościową (formuła baseline), należy podać wartość maksymalnego MFI na podstawie parametru „normalized /baseline” dla każdej klasy anty-HLA oraz anty-MIC. Obowiązek wykonania i wpisania wyników oznaczenia specyficzności przeciwciał (SAB) przy pozytywnym screeningu.

 Wyniki max MFI wprowadzane zgodnie z raportem LabScreen Australia MFI – detail.

Anty-HLA (Luminex SAB), identyfikacja – oznaczanie specyficzności przeciwciał anty-HLA - 4 razy w roku (co kwartał). W surowicach wybranych do badań specyficzności przeciwciał anty-HLA należy wykluczyć efekt prozonalny – preanalityka z EDTA. Ocena badań powinna być prowadzona według formuły baseline, minimalne obowiązkowe raportowane wartości powyżej 500 MFI. Fakultatywnie raportowane w zakresie wartości 1-499 MFI.

Przewiduje się opracowanie wspólnego protokołu EDTA jednakowego dla wszystkich pracowni zgodności tkankowej.

Anty-HLA (Luminex anty-C1q), ocena - oznaczanie lityczności przeciwciał anty-HLA - 2 razy w roku (co drugi kwartał / co pół roku). Badanie należy prowadzić w tych samych surowicach, gdzie uzyskano dodatni wynik oznaczenia specyficzności przeciwciał anty-HLA, wobec tych samych reguł dla raportowania wyniku (baseline /min 500 MFI).

▶ Obecnie przyjęty próg 500 MFI dla badań oznaczania lityczności przeciwciał anty-HLA (anty-C1q) będzie dostosowany w zależności od uzyskanych w populacji rezultatów.
▶ Dla uzyskanych wartości Luminex anty-C1q należy podać wartość wirtualnego PRA (vPRA). Na podstawie wyniku vPRA nastąpi wyodrębnienie potencjalnych biorców z najmniejszą szansą na przeszczepienie (vPRA > 85%) i rozszerzenie diagnostyki.

Zastrzeżenie dotyczące częstotliwości badań poziomu przeciwciał anty-HLA: W przypadku chorych po leczeniu immunomodulującym oraz chorych wysoko immunizowanych zgłoszonych do przeszczepienia krzyżowego/łańcuchowego dopuszcza się możliwości wykonywania badań anty-HLA z większą częstotliwością, zgodnie z zaleceniami ośrodka transplantacyjnego. W przyszłości przewiduje się u wszystkich chorych, ze statusem aktywny na KLO oczekujących na przeszczepienie, wykonywanie badań anty-HLA po odnotowanych zdarzeniach immunizacyjnych lecz nie rzadziej niż co pół roku.

4)  Wykluczenie autoprzeciwciał klasy IgG/ IgM

U biorców wysokozimmunizowanych, należy wykonać badanie auto CM-CDC – próbę krzyżową metodą serologiczną (complement dependent cytotoxicity cross-match) bez i z odczynnikiem DTT. Należy poinformować stację dializ o konieczności wykonania badań i pobrania odpowiedniego materiału (surowica + krew biorcy pobrana na heparynę)

▶ Planowane w kolejnych etapach wdrożenia programu, po ustaleniu kryteriów MFI dla Luminex anty-C1q.
▶ Opcjonalna weryfikacja obecności przeciwciał przeciwko zdenaturowanym epitopom (anty-dHLA) -> korekta vPRA i anty-HLA.

5)  Próba krzyżowa przed przeszczepieniem

Próba krzyżowa z pulą limfocytów T i B (CM-CDC_T+B) oraz próba krzyżowa z pulą limfocytów B (CM-CDC_B).

Dla potencjalnych biorców z potwierdzonymi przeciwciałami klasy IgM należy wykonać próbę krzyżową z odczynnikiem DTT (CM-CDC+DTT).

▶ Zalecenia dla pacjentów wysokiego ryzyka immunologicznego tj. CM-CDC_T+B (ujemny) i CM-CDC_B (dodatni) oraz ostatni wynik DSA KLASY II > 2000 MFI: Przed transplantacją należy wykonać próbę krzyżową metodą cytometrii przepływowej (FCXM - flow cytometry cross-match) oraz dodatkowe badanie CM-CDC z nowego pobrania (maksymalnie 24 godziny przed przeszczepieniem).

data publikacji 14.04.2021 r.

Algorytm badań immunologicznych - Pracownia Zgodności Tkankowej

1)  Badanie antygenów zgodności tkankowej (HLA)

    ­   biorca i dawca w zakresie antygenów HLA- A, B, C, DR, DQA1/B1, DPA1/B1 ( niski / pośredni poziom rozdzielczości)
    ­   biorca zakwalifikowany do kolejnego przeszczepu powinien mieć wykonane ponowne oznaczenie antygenów HLA

 

2)   Monitorowanie immunologiczne- oznaczanie przeciwciał anty-HLA

    ­   PRA-CDC -   1 x kwartał  (panel 30 dawców)
    ­   oznaczanie obecności przeciwciał anty-HLA  (Luminex screen) – 1 x kwartał
    ­   oznaczanie specyficzności przeciwciał anty-HLA (Luminex Single Antigen- L-SAB)–  minimum  2 x rok
    ­   oznaczanie lityczności przeciwciał anty-HLA  (Luminex C1q screen- anty-C1q SAB)- minimum 2 x rok, ( w tych samych surowicach, gdzie L-SAB dodatni)

     

3) Weryfikacja obecności cytotoksycznych przeciwciał klasy IgM*

    ­   u biorców, u których stwierdzono obecność przeciwciał cytotoksycznych (PRA-CDC ≥ 80%) i równocześnie brak jest przeciwciał w testach Luminex Screen lub mających niskie wartości w testach Luminex Single Antigen ( L-SAB < 5000 MFI), należy wykonać równocześnie test PRA-CDC i  PRA-CDC z odczynnikiem DTT (rozróżnienie przeciwciał IgG /IgM)
    * UWAGA: W celu weryfikacji obecności przeciwciał o niskich wartości MFI lub ich braku, w testach fazy stałej (Luminex) należy wykluczyć efekt prozonalny stosując np. inkubację surowicy badanej z EDTA

     

4) Wykluczenie autoprzeciwciał klasy IgG/ IgM

    ­   auto CDC-XM bez i z odczynnikiem DTT (surowica + krew biorcy pobrana na heparynę)

 

5) Biorcy zimmunizowani - obecne przeciwciała anty-HLA w testach fazy stałej (Luminex)

    ­   Na podstawie badanie lityczności wykrytych przeciwciał anty-HLA (Luminex C1q screen) określenie nieakceptowalnych antygenów HLA (unacceptable HLA antigens mismatches -UAMs)
    ­   Jeżeli biorca ma lityczne przeciwciała przeciw antygenom HLA dawcy, jest to przeciwskazanie do przeszczepienia nerki (wirtualny cross-match- vXM dodatni).

 

6) Wirtualne PRA (vPRA).

    ­   Do kalkulacji vPRA podawane są wyłącznie swoistości litycznych przeciwciał anty-HLA L-SAB C1q[+].
    ­   Na podstawie wyniku vPRA wyodrębnienie biorców z najmniejszą szansą na przeszczep (vPRA>85%) i rozszerzenie diagnostyki.

     

7) Biorcy vPRA >85% , wykluczone auto /allo IgM

    ­   Weryfikacja obecności przeciwciał przeciwko zdenaturowanym epitopom (anty-dHLA)- korekta vPRA i anty-HLA

     

8) Potencjalny biorca zakwalifikowany do biologicznej próby krzyżowej CM-CDC

    ­   XM-CDC:  z pulą  limfocytów T i B  oraz B , minimalne czasy inkubacji 60 min / 60 min , w temp. pokojowej
    ­   XM-CDC + DTT   dla biorców z potwierdzonymi przeciwciałami klasy IgM

     

9) Opcjonalnie:

    ­   Pacjenci do re-tx z obecnymi nielitycznymi L-SAB DSA > 3000 MFI [ DSA (+), C1q( -) ],
    ­   oraz pacjenci do pierwszej transplantacji z obecnymi nielitycznymi L-SAB DSA >5000 MFI  - zalecany dodatkowo FCXM
    ­   Pacjenci wysokiego ryzyka immunologicznego, przed tx dodatkowo wykonany CM-CDC z surowicą świeżo pobraną (24 godz.)

 

© 2023 Centrum Organizacyjno-Koordynacyjne ds. Transplantacji "Poltransplant"